Les calculs s’effectuent dans votre navigateur ; cet outil n’enregistre ni n’envoie les données saisies. Décimales avec virgule ou point.
Ces outils calculent des quantités pour la planification au laboratoire. Ils ne choisissent pas de solvant, ne vérifient pas la solubilité et n’établissent pas la qualité de l’échantillon. Réservé à la recherche en laboratoire. Ne convient pas à un usage chez l’humain ou l’animal.
De la masse de peptide à la concentration molaire
La concentration molaire exprime la quantité de matière en moles par volume de solution. Une concentration massique, comme le mg/mL, répond à une autre question : quelle masse est présente dans ce volume. Pour passer de l’une à l’autre, il faut la masse molaire de l’entité chimique comptée.
Utilisez c = m ÷ (M × V), où c est la concentration en mol/L, m la masse en grammes, M la masse molaire en g/mol et V le volume final de la solution en litres. Un mol/L correspond à une molarité de 1, notée 1 M. Le millimolaire, le micromolaire et le nanomolaire correspondent à 10⁻³, 10⁻⁶ et 10⁻⁹ mol/L.
Le premier outil convertit les unités de masse et de volume saisies avant d’appliquer cette équation. Son champ facultatif de teneur en peptide est une correction par fraction massique que vous fournissez ; ce n’est pas une estimation tirée de la séquence ou du nom du produit. Laissez 100 pour un calcul nominal non corrigé ou si la masse saisie est déjà la masse nette de peptide.
Exemple résolu : 2 mg dans un volume final de 4 mL
Prenons une entité peptidique d’une masse molaire de 1000 g/mol. Si 2 mg de cette entité sont présents dans un volume final de 4 mL, la concentration massique est de 0,5 mg/mL. Convertissez 2 mg en 0,002 g et 4 mL en 0,004 L avant de calculer la quantité et la concentration.
La quantité est de 0,002 g ÷ 1000 g/mol = 0,000002 mol, soit 2 µmol. En divisant par 0,004 L, on obtient 0,0005 mol/L = 0,5 mM = 500 µM. Le calcul est le même que l’on saisisse 2 mg et 4 mL ou 2000 µg et 4000 µL.
| Grandeur | Valeurs équivalentes |
|---|---|
| Masse | 2 mg = 2000 µg = 0,002 g |
| Volume final | 4 mL = 4000 µL = 0,004 L |
| Quantité | 2 µmol |
| Concentration massique | 0,5 mg/mL = 0,5 g/L |
| Concentration molaire | 500 µM = 0,5 mM = 0,0005 M |
Raccourci pour convertir des mg/mL en µM
Lorsque la masse molaire est exprimée en g/mol, µM = mg/mL × 1 000 000 ÷ masse molaire. Pour des mM, utilisez mg/mL × 1000 ÷ masse molaire. Ces raccourcis fonctionnent parce que 1 mg/mL vaut numériquement 1 g/L ; les autres facteurs convertissent les mol/L dans l’unité molaire choisie.
Par exemple, 0,25 mg/mL d’une entité peptidique de 2000 g/mol correspondent à 125 µM. Un autre peptide à 0,25 mg/mL peut avoir une concentration molaire différente si sa masse molaire diffère. La concentration massique seule ne dit pas combien de molécules sont présentes.
Avant de comparer deux expériences, vérifiez que les deux concentrations portent sur la même entité peptidique et la même base massique. Une valeur tirée de la masse brute de poudre n’est pas automatiquement comparable à une valeur corrigée par une teneur en peptide mesurée.
Masse brute, teneur en peptide et pureté
Une préparation pesée peut contenir du peptide, des contre-ions, de l’eau résiduelle et d’autres composants. Si une documentation adaptée établit une fraction massique de peptide, multipliez la masse brute par cette fraction avant de convertir en moles la masse de peptide obtenue. La masse molaire doit correspondre à l’entité représentée par cette masse corrigée.
Dans l’exemple des 2 mg, une fraction massique de peptide de 80 % explicitement documentée donnerait 1,6 mg sur base peptide et 400 µM dans le même volume final de 4 mL, avec 1000 g/mol. C’est une illustration arithmétique, pas une valeur de dosage d’un produit NorthVerity.
Un pourcentage d’aire HPLC n’est pas automatiquement une fraction massique. La teneur nette en peptide et la pureté chromatographique décrivent des aspects différents d’un matériau, et leur usage dans le calcul de la concentration du peptide cible dépend de la méthode analytique et de la base d’expression. Cet outil ne multiplie pas par un pourcentage HPLC et ne déduit pas la pureté du peptide cible.
Diluer une solution mère connue : C₁V₁ = C₂V₂
Pour une dilution qui conserve la quantité de soluté, C₁V₁ = C₂V₂. C₁ est la concentration de la solution mère, V₁ le volume de solution mère transféré, C₂ la concentration cible et V₂ le volume final de la solution. En isolant le transfert, on obtient V₁ = C₂V₂ ÷ C₁.
Supposons qu’il vous faille 10 mL à 100 µM à partir d’une solution mère à 10 mM. Exprimez d’abord les deux concentrations dans la même unité : 10 mM font 10 000 µM. Le volume à transférer est de 100 × 10 ÷ 10 000 = 0,1 mL, soit 100 µL. Transférez ce volume et complétez jusqu’à un volume final total de 10 mL.
Si l’on considère les volumes comme additifs, le diluant estimé est de 9,9 mL. Le calculateur affiche le transfert et le volume final requis, car c’est le volume final qui fait référence. L’équation ne détermine pas un solvant compatible et n’établit pas que le peptide reste dissous.
| Donnée ou résultat | Valeur |
|---|---|
| Concentration de la solution mère | 10 mM |
| Concentration cible | 100 µM |
| Volume final de la solution | 10 mL |
| Volume de solution mère à transférer | 100 µL |
| Diluant estimé si les volumes sont additifs | 9900 µL |
Vérifications avant de se fier au résultat
Utilisez le volume final de la solution au lieu de supposer que le volume de solvant ajouté égale le volume de la solution terminée. Gardez les conversions d’unités visibles dans le dossier. Confondre mg et µg, ou mM et µM, change le résultat d’un facteur mille.
Une concentration cible supérieure à celle de la solution mère ne peut pas être obtenue par simple dilution. Si les deux concentrations sont égales, aucune dilution n’est nécessaire. Si le transfert calculé est inférieur à la plage de travail validée de votre matériel, le nombre affiché n’est pas une consigne de pipetage réaliste ; prévoyez une dilution intermédiaire adaptée selon votre méthode de laboratoire.
Le calcul suppose que le matériau correspondant à la masse saisie est présent dans la solution sur la base indiquée. La dissolution incomplète, l’adsorption, la précipitation, la dégradation et les pertes lors des transferts sont des questions expérimentales distinctes. Une concentration calculée n’est pas une mesure analytique de la solution finale.
Consignez l’identifiant du matériau, le lot, la forme chimique, la base massique, la source de la masse molaire, le volume final, les calculs et la date de préparation. Pour les questions d’achat, demandez les documents du lot proposé et levez les incertitudes avant de traiter une valeur nominale comme vérifiée.
Certificat d’analyse (COA) : comment lire le COA d’un peptide
Questions fréquentes
Puis-je convertir des mg/mL en µM sans masse moléculaire ? Non. La concentration molaire compte la quantité en moles : la masse molaire correspondante est indispensable. Une concentration massique peut en revanche être indiquée sans elle.
1 mg/mL est-il égal à 1 µg/µL ? Oui. Le numérateur et le dénominateur changent chacun d’un facteur 1000, la concentration massique reste la même.
Ce calculateur choisit-il un solvant ou des conditions de conservation ? Non. Utilisez la documentation propre au matériau et une méthode de laboratoire adaptée. Le calcul fournit des quantités, pas une preuve de solubilité, de stabilité ou d’aptitude biologique.
Dilution en série : formule, tableau et exemples résolus
Une dilution en série utilise la solution d’une dilution pour préparer la suivante. Dans cette feuille, chaque étape utilise le même facteur de dilution et le même volume préparé. La solution mère d’origine est le point de départ, pas le tube 1. La première concentration diluée vaut donc C₀/D et la concentration à l’étape n vaut C₀/Dⁿ.
Ici, D est un facteur de réduction supérieur à 1. Une dilution au 1/10 signifie une partie de la solution précédente pour dix parties au total : une partie d’échantillon plus neuf parties de diluant lorsque les volumes sont additifs. Cela ne signifie pas une partie d’échantillon plus dix parties de diluant. Certaines références appellent dilution la fraction restante, 1/D ; notez la convention avec vos chiffres.
Si V est le volume préparé dans chaque tube, le volume de transfert est V/D et le diluant estimé V − V/D. Saisissez la concentration initiale en M, mM, µM ou nM ; le tableau conserve cette unité de concentration d’un bout à l’autre. Tous les volumes exportés sont exprimés en µL, même si la saisie utilise des mL ou des L.
Le troisième calculateur applique ces équations de 1 à 48 étapes. Les volumes décrivent un modèle de planification avec volumes additifs, mélange homogène et aucune perte de soluté lors des transferts. Une autre méthode, des facteurs variables par étape ou des prélèvements supplémentaires exigent un plan distinct.
Quatre dilutions au 1/10 à partir d’une solution mère à 1000 µM
Choisissez une solution de départ à 1000 µM, un facteur de 10, quatre étapes de dilution et un volume préparé de 1000 µL par tube. Chaque étape reçoit 100 µL de la source indiquée et environ 900 µL d’un diluant compatible. Les concentrations successives sont de 100, 10, 1 et 0,1 µM.
Seuls les 100 premiers µL proviennent de la solution mère d’origine. Le deuxième transfert vient du tube 1, le troisième du tube 2 et le quatrième du tube 3. Le diluant total estimé est de 4 × 900 = 3600 µL. Ces quantités n’incluent pas de matériau supplémentaire pour le volume mort, les pertes ou les répétitions.
Après le transfert suivant, les tubes 1 à 3 conservent chacun 900 µL. Le tube 4 conserve 1000 µL, car ce plan ne prévoit aucun transfert depuis le dernier tube. Prélever une aliquote représentative dans un tube bien mélangé réduit son volume sans changer sa concentration. S’il vous faut au moins 1000 µL dans chaque tube, un volume préparé de 1000 µL ne suffit pas pour les premiers tubes.
| Étape / source | Concentration (µM) | Transfert | Diluant estimé | Reste après transfert |
|---|---|---|---|---|
| 1 / solution mère | 100 | 100 | 900 | 900 |
| 2 / tube 1 | 10 | 100 | 900 | 900 |
| 3 / tube 2 | 1 | 100 | 900 | 900 |
| 4 / tube 3 | 0,1 | 100 | 900 | 1000 |
Série au 1/2 et planification du volume restant
Avec une solution de départ à 20 µM, un facteur de 2 et 200 µL préparés par tube, chaque étape associe 100 µL de la solution précédente à environ 100 µL de diluant. Quatre étapes donnent 10, 5, 2,5 et 1,25 µM. Les trois premiers tubes conservent 100 µL après le transfert suivant ; le dernier en conserve 200.
Dans ce modèle à volume constant, le volume restant dans un tube précédent vaut R = V × (1 − 1/D). Pour conserver au moins R dans ces tubes, utilisez V = R × D/(D − 1), puis vérifiez la capacité du récipient et la plage de transfert. Par exemple, conserver 200 µL dans chaque tube précédent d’une série au 1/2 exige 400 µL préparés par tube et un transfert de 200 µL. Le dernier tube contiendrait 400 µL, sauf prélèvement prévu par votre méthode.
Une série au 1/2 et une série au 1/10 couvrent des écarts de concentration différents. Choisissez le facteur selon la méthode expérimentale et la plage nécessaire. Le calculateur ne choisit ni concentration d’essai, ni exposition biologique, ni dose de traitement.
Copier le tableau de dilution et vérifier la feuille
« Copier le tableau » produit une feuille séparée par des tabulations pour un tableur. « Télécharger le CSV » inclut la concentration initiale, le facteur par étape, le tube source, le volume préparé, le transfert, le diluant estimé et le volume restant après le transfert suivant. Si l’accès au presse-papiers est indisponible, l’outil affiche un texte sélectionnable en solution de repli. Toute modification des saisies efface l’ancien résultat, afin qu’un tableau exporté corresponde au calcul affiché.
Vérifiez la concentration la plus basse, le volume transféré, la solution mère disponible et le liquide restant dans chaque tube. Un transfert calculé inférieur à 1 µL est signalé pour être comparé à la plage validée du matériel ; un nombre plus grand ne convient pas automatiquement à toute pipette. Mélangez selon la méthode de laboratoire avant de prélever l’aliquote suivante et tenez compte séparément des pertes de transfert.
Le CSV est un relevé de calcul, pas une mesure ni un protocole de laboratoire complet. Conservez dans le dossier associé l’identité du matériau, le lot, le solvant, la date de préparation et tout ajustement expérimental. La solubilité, l’adsorption, la stabilité et les performances des instruments ne se déduisent pas du facteur de dilution.
Rattacher le calcul à la documentation du matériau
Pour un achat de peptides, établissez d’abord ce que représente la concentration de départ : la forme chimique indiquée, la base massique et la masse molaire correspondante. Le calculateur de masse moléculaire aide pour une séquence prise en charge, et le guide sur la pureté et la teneur nette explique pourquoi un pourcentage d’aire HPLC n’est pas automatiquement une correction de la masse pesée.
Examinez les informations disponibles sur le matériau et demandez la documentation du lot proposé en sollicitant un devis écrit. Indiquez l’identifiant du matériau et les informations manquantes à clarifier. Le calcul lui-même ne vérifie ni le matériau fourni, ni la disponibilité actuelle, ni le lot proposé.
Calcul de la masse molaire d’un peptide : calculateur de masse moléculaire
Pureté du peptide et teneur nette en peptide
Certificat d’analyse (COA) : comment lire le COA d’un peptide
Équations et références
Recherche en laboratoire uniquement. Pas d’usage humain ou animal.